Roles de FGF en el
desarrollo del folículo ovárico
El desarrollo del folículo ovárico de prenatal a
preovulatorio es altamente complejo e involucra
múltiples rutas de señalización endocrinas y paracrinas. Las
gonadotropinas hipofisarias son los principales
disparadores del desarrollo de los folículos
ováricos, pero varias familias de
factores de crecimiento también tienen roles importantes, incluyendo factores
de crecimiento de fibroblasto (FGF). En
los mamíferos, la familia FGF consiste
de 18 proteínas secretadas (y cuatro proteínas intracelulares llamados factores
homólogos de FGF) agrupados en
subfamilias de acuerdo a su secuencia homóloga y filogenia y los
miembros de la misma subfamilia tienen similares propiedades de unión al
receptor. En el folículo ovárico, las células tecales son mesenquimales
y las células granulosas son epiteliales, por lo tanto los FGF
paracrinos pueden tener un rol en el desarrollo del folículo. Hay evidencia
que el FGF2 actúa sobre las células granulosas para promover la proliferación
celular y disminuir la apoptosis y la esteroidogénesis. Otros FGF han sido implicados en la función del ovario y el desarrollo de
los folículos. La expresión de algunos miembros de la familia FGF en el ovario
es específica para un tipo de célula;
por ejemplo, el FGF7 es expresado en células tecales pero no en células
granulosas u oocitos.
La mayoría de los FGF
son factores paracrinos, aunque la subfamilia FGF19 (FGF19, FGF21 y
FGF23) son factores endocrinos con roles
en la homeostasis del colesterol, la vitamina D y el fosfato. La mayor
parte de las proteínas FGF poseen un péptido señal y son secretadas a través de la convencional ruta retículo endoplásmico-Golgi, aunque el FGF1 y el FGF2 son secretados a través de una ruta que involucra la
translocación a la membrana celular y la unión a proteoglucanos de la superficie celular. Los receptores de
los FGF (FGFR) son de la clase de receptores
tirosina quinasa que derivan de cuatro genes principales, FGFR1, FGFR2, FGFR3 y FGFR4. Eventos de “splicing” alternativo resultan en
dos variantes de FGFR1, FGFR2 y FGFR3 comúnmente llamadas formas “b” y “c”. Estas
variantes tienen propiedades de unión al
ligando marcadamente diferentes. Por ejemplo, los miembros de la familia
FGF7 (FGF3, FGF7, FGF10 y FGF22) activan
la forma “b” -pero no la forma “c”- de
FGFR1 y FGFR2, mientras otros FGF activan la forma “c”. En general, las forma
“b” de las proteínas FGFR son expresadas
en tejidos epiteliales y las formas “c” son expresadas en células
mesenquimales.
La actividad biológica de los FGF depende de sus
interacciones con la matriz extracelular (MEC). Para activar sus receptores
(FGFR), los FGF paracrinos necesitan
unirse a heparan sulfato (HS), el cual
es un polisacárido sulfatado lineal
presente en la MEC y en la superficie celular donde está unido a proteínas solubles (ej: perlecan) o proteínas
de membrana (ej: sindecan, glipican) colectivamente conocidas como HS
proteoglucanos (HSPG). FGF y FGFR se
unen a HS, lo cual incrementa la afinidad de unión del receptor y estabiliza el complejo FGF-FGFR. Los FGF
paracrinos son inactivos cuando se aplican a líneas celulares deficientes en
HSPG y la adición de heparina o su HS restaura la actividad biológica de los
FGF. La señal mesenquimal-epitelial de los FGF es más evidente en órganos en desarrollo. En una extremidad en desarrollo, el FGF10
secretado por el mesénquima activa FGFR2b en el borde ectodérmico apical, una etapa temprana critica en la formación de
la yema de la extremidad. En el desarrollo del pulmón de ratón, la activación
del FGR2b epitelial por el FGF10
mesenquimal epitelial es esencial para la ramificación de las vías áreas y la activación del FGFR2c por el FGF18 mesenquimal es esencial para el desarrollo
alveolar. Un nivel adicional de control
de los órganos en desarrollo es
ejercido por las diferencias en la
actividad biológica de los miembros de
la misma subfamilia de FGF. Por ejemplo, el FGF7 induce la ramificación de las yemas de la extremidad mientras el
FGF10 induce la elongación de las yemas. Otro ejemplo, el FGF18 estimula la
expansión en el cerebro medio embrionario mientras el FGF8 estimula la diferenciación del cerebro medio en cerebelo.
A diferencia de los pulmones y las extremidades que se
desarrollan una sola vez, el ovario postnatal de los mamíferos es un sitio de
constante desarrollo de folículos a
partir del “pool” de folículos primordiales. Estos folículos consisten de un
oocito inmaduro rodeado por una capa simple de células epiteliales escamosas
“pre-granulosas”. Para convertirse en folículos en crecimiento, las células
pre-granulosas escamosas necesitan
desarrollarse en células granulosas cuboidales
y proliferar, al tiempo que el folículo adquiere una capa de células
tecales. En la medida que se forma el antro, las capas de células epiteliales y
mesenquimales proliferan y esto en parte es regulado por la
comunicación mesenquimal-epitelial. Ciertas características de la señal de las
subfamilias FGF7 y FGF8 en el folículo preantral se asemejan a las que ocurren
en el pulmón y las extremidades. Sin embargo, hay muy pocos estudios de estos
FGF en folículos preantrales. Hay mucha más información acerca del rol de los FGF en la señal
mesenquimal-epitelial en los folículos
antrales. El FGF10 es expresado predominantemente en células tecales y el
FGFR2b es detectado predominantemente en células granulosas. El FGF18 es
también detectado en células tecales
aunque la expresión de FGFR2c y FGFR3c es detectable en células granulosas y
tecales.
El FGF10 ha sido descrito en el folículo antral y tiene un
patrón de expresión diferente al de FGF7. Mientras el FGF7 está restringido a la capa tecal, el FGF10 ha
sido identificado en células tecales y oocito.
Es interesante destacar que ambas proteínas han sido detectadas en
folículos preantrales, los cuales no contienen células tecales, lo que sugiere que puede ocurrir un “switch” en
la localización una vez que los
folículos se vuelven antrales. Más aún,
mientras los niveles de FGF7 no son alterados en folículos sanos, los niveles
de FGF10 son significativamente mayores en células tecales de folículos menos
estrogénicos (atrésicos) que en folículos altamente estrogénicos. Por otra
parte, la adición de FGF10 a células
granulosas inhibe la secreción de esteroides y la inyección de FGF10
directamente en el folículo en
crecimiento causa la regresión del
folículo. La presencia de FGF10 en el oocito ha dado lugar a varios estudios sobre su rol en la función
de las células del cúmulus y la
maduración del oocito. La adición de
FGF10 exógeno a complejos cumulus-oocito
de bovino durante la maduración in
vitro incrementa la expansión del cúmulus y la tasa de desarrollo del blastocisto. Adicionalmente, se ha
demostrado que el FGF10 exógeno estimula la captación de glucosa y disminuye el
nivel de apoptosis en los oocitos
durante la maduración in vitro. Se
desconoce si el FGF7 tiene el mismo efecto.
Los efectos de FGF7 y FGF10 sobre
el crecimiento in vitro de folículos preantrales han sido explorado por varios
laboratorios. En ratas, el FGF7 estimula el desarrollo de folículos primarios mientras el FGF10 estimula el desarrollo de folículos
primarios en cabras. Muy poco se conoce
acerca del rol de los otros miembros
de la familia FGF7 (FGF3 y FGF22) en el ovario.
La familia FGF8 incluye
FGF17 y FGF18 además del
prototipo FGF8 y han sido detectados en oocitos, células tecales y células
granulosas. Los principales receptores
de estos FGF han sido localizados en células granulosas y tecales. En el ovario de ratón, el FGF8 inhibe la secreción de estradiol en las
células granulosas pero no tiene efecto sobre la secreción de progesterona. El
efecto de FGF17 y FGF18 sobre las células granulosas ha sido explorado en ovario de gata, ambos FGF inhiben la
secreción de estradiol y progesterona.
Las acciones pro-apoptosis de los
FGF son raras, pero el FGF18 es considerado un factor pro-apoptosis. Varios
estudios sugieren que el FGF18 activa una ruta apoptótica a través del FGFR3c
en células granulosas y otros tipos de células.
Las rutas intracelulares usadas por los FGF han sido
estudiadas en una variedad de líneas
celulares. La unión del ligando provoca la activación del FGFR, el cual una vez
activado se dimeriza y el cambio
conformacional en la estructura del receptor causa la autofosforilación de residuos tirosina específicos. En estas
condiciones se activan principalmente dos rutas de señalización: la
fosforilación de MAPK vía fosfolipasa C y la activación de la
fosfatilinositol-3-quinasa que a su vez activa las rutas Akt y proteína quinasa
C (PKC). Esto resulta en la expresión de
genes de respuesta inmediata como la
familia Sprouty (SPRY) de reguladores negativos de receptores tirosina quinasa,
el receptor nuclear orfan 4A y la familia ETS de factores de transcripción.
Estas rutas de señalización son activas en células granulosas, principalmente
cuando el ligando es el FGF2. En las
células granulosas de rata, el FGF2 estimula
la señal de calcio a través de
una ruta dependiente de la PKC y en
células granulosas de bovino, el FGF2
estimula la fosforilación de
MAPK3/1 y Akt. En células granulosas humanas, el FGF2 pero no el FGF4 o el
FGF10, incrementa los niveles de SPRY2, mientras en células granulosas de
bovino, FGF2 y FGF4 estimulan los niveles de SPRY2. Varios estudios han
demostrado que el FGF8 estimula la
fosforilación de MAPK3/1 y los niveles
de SPRY2 en células granulosas/cúmulus de
humano, rata y ratón. En una comparación
de las rutas de señalización de FGF8 y FGF18 en células granulosas de bovino
se demostró que el FGF8 activa las típicas respuestas FGF incluyendo la fosforilación de MAPK3/1 y la rápida y transitoria
expresión de SPRY2, mientras el FGF18 no altera ninguna de estas rutas. Sin embargo, la diferencia
más interesante entre ambos FGF es la
estimulación por FGF8 –y la marcada inhibición por FGF18- de la expresión del
gen GADD45B. La disminución de la expresión
de GADD45B ha sido relacionada con incremento de la apoptosis en varios
tipos de células y puede ser parte del mecanismo usado por el FGF18 para incrementar la
apoptosis en las células granulosas.
La evidencia acumulada sugiere potenciales roles para
miembros de las familias FGF7 y FGF8 en el crecimiento y desarrollo de folículos preantrales/antrales y que
algunos FGF de la misma subfamilia que activan a los mismos receptores tiene
efectos biológicos marcadamente diferentes sobre sus células blanco. Tales
diferencias entre FGF relacionados han
sido descritas durante el desarrollo embrionario y entre ellas destacan las
diferencias reportadas entre FGF7 y FGF10 y entre FGF8 y FGF10. La morfogénesis de la ramificación se refiere
al crecimiento y ramificación de
estructuras tubulares en tejidos como el pulmón, el riñón y las glándulas salivares. En estos tejidos, FGF7 y FGF10 juegan roles distintos; el FGF7 induce
la expansión o ramificación de yemas epiteliales mientras el FGf10 induce
la elongación de las yemas. Por la subfamilia FGF8, el FGF18 estimula la
expansión en el cerebro medio
embrionario, mientras el FGF8 transforma el cerebro medio en cerebelo. La
literatura actual sugiere que estas
distintas actividades biológicas pueden ser dirigidas por (i) señales
intracelulares diferentes y/o (ii) interacciones entre los FGF, los FGFR y los HSPG.
El ARN mensajero que codifica al FGF8 -pero no al FGF18-
por “splicing” alternativo genera proteínas
con diferentes N-terminal. Estos eventos
resultan en una forma corta (FGF8a) y una forma larga (FGF8b) entre
otras y el FGF8b recombinante ha sido
usado en estudios del ovario. FGF8a y FGF8b
difieren en su actividad biológica, el FGF8a induce la expansión del
cerebro medio embrionario (de manera similar al FGF18), mientras el FGF8b transforma el cerebro medio embrionario en
cerebelo. El FGF8b provoca una fuerte
activación de MAPK3/1 en el cerebro
medio, mientras FGF8a resulta en un
nivel menor de fosforilación de MAPK3/1.
Los datos de los estudios con células granulosas bovinas demuestran que el FGF8b resulta en una fuerte
y transitoria fosforilación de MAPK3/1 mientras la adición de FGF18 provoca una respuesta débil. La
diferencia en las actividades de FGF8a y FGF8b han sido atribuidas a un
residuo fenilalanina (F32) presente en el N-terminal de FGF8b que permite una fuerte unión con el
receptor. F32 está ausente en el
FGF8a lo que da lugar a un débil
complejo de unión con el receptor. Sin
embargo, esto no es una explicación satisfactoria de la diferencia entre FGF8a y FGF8b pues el
FGF18 contiene el residuo F32 presente en el FGF8b. Es sabido que las
dicotomías débil vs fuerte y transitoria
vs sostenida activación de MAPK3/1 permiten respuestas celulares
distintas, dirigiendo las células hacia proliferación o apoptosis de una manera específica de contexto celular.
Esto puede explicar en parte las respuestas diferentes de las células granulosas a las acciones de
FGF8b y FGF18.
FGF10 y FGF7 se unen
a HSPG y el HS altera selectivamente
la actividad biológica de FGF7/FGF10. Estos FGF tienen diferente
afinidad de unión a la MEC, el FGF7 -pero no el FGF10- difunde rápidamente a través de la MEC. La adición de heparina a
los cultivos de células inhibe la actividad mitogénica de FGF7 pero estimula la
de FGF10. El HS también es esencial para
la subfamilia FGF8, la adición de FGF8 a células deficientes en HS no estimula
la proliferación celular o la fosforilación de MAPK3/1, mientras con el
co-tratamiento con heparina estas actividades son evidentes. Sin embargo, la
presencia o ausencia de HS no es la historia completa, el tipo de cadena HS también puede alterar la actividad
biológica de los FGF. Por ejemplo, el perlecan derivado de células endoteliales
estimula la proliferación inducida por FGF18 en mayor grado que el perlecan
derivado de condrocitos. El tipo de HS también altera la capacidad de un FGF para activar a un
receptor específico, las cadenas sacáridas cortas son suficientes para permitir
al FGF1 activar al FGFR2b, mientras las cadenas sacáridas largas son requeridas para la activación del FGFR2b
por FGF7. ¿Cómo impacta esto la señal
FGF en el folículo? Los folículos antrales contienen numerosos
proteoglucanos y las células granulosas
producen HSPG. Las celulas tecales están separadas de las granulosas por
una membrana basal que contiene perlecan y otros componentes, el nivel de estos
componentes cambia con el crecimiento del folículo. Adicionalmente, una forma
particular de MEC (focimatriz) que contiene perlecan ocurre como agregado en la capa de células
granulosas. Los niveles de perlecan cambian durante el desarrollo del folículo
y los niveles de HSPG en la focimatriz de la capa de células granulosas son
significativamente mayores en folículos
atrésicos en comparación con folículos sanos. Más aún, el SHPG del folículo es sulfatado y,
al menos en la vaca, la cantidad de sacáridos derivados de HS cambia durante el
desarrollo del folículo y la atresia. Los
agregados de focimatriz pueden jugar un rol
en la regulación de la bioactividad de FGF10 o FGF18 en la capa de células granulosas y
los cambios en la sulfatación de
perlecan durante el crecimiento/atresia del folículo puede disminuir o aumentar
las potenciales acciones pro-apoptosis del FGF18.
En conclusión, la señal FGF en los tejidos en desarrollo
es altamente regulada en múltiples niveles: transcripción de genes, splicing
alternativo, activación de distintas rutas intracelulares y la presencia de patrones
de sulfatación específicos en las proteínas de la MEC. En el ovario, FGF7 y
FGF10 pueden tener efectos diferentes sobre las células granulosas en
comparación con el FGF18. Aunque FGF7 y FGF10 se unen al mismo receptor FGFR2b,
tienen diferente afinidad por HS lo que causa
una divergencia de los eventos de fosforilación del receptor entre estos dos ligandos. Las diferencias en los efectos
biológicos de FGF8 y FGF18 sobre las células granulosas pueden estar relacionadas con la naturaleza
de la sulfatación de los HSPG.
Fuente: Price CA (2016). Mechanisms of fibroblast
growth factor signaling in the ovarian follicle. Journal of Endocrinology 228:
R31-R43.